Resumen
La ingeniería tisular es un área científica multidisciplinaria la cual tiene como finalidad terapéutica restaurar, sustituir o incrementar las actividades funcionales de los tejidos orgánicos. Objetivos: Realizar una revisión de la literatura sobre la ingeniería tisular a nivel del área bucomaxilofacial. Métodos: Se realizó una búsqueda bibliográfica mediante los portales PubMed MEDLINE, Google Scholar, y LILACS, usando los términos “células madre, regeneración ósea y factores de crecimiento tisular”. Resultados: Se obtuvieron 193 resultados
positivos, de los cuales 24 se utilizaron para el desarrollo del presente trabajo. Discusión: Han sido expuestos varios biomateriales capaces de propiciar la neoformación ósea, siendo esencial su correcta manipulación, la conformación de una arquitectura adecuada y la sinergia de las diversas propiedades. Conclusiones: Los andamios son los que brindan mayor
oferta para su uso y la elección de cada uno de ellos no depende del material en sí mismo.
Referencias
2. Espejo SA, Campos F, Piedra LM, Durand Herrera D, Moral-Munoz JA,Campos A, Piedra MAM. Global Tissue Engineering Trends: A Scientometric and Evolutive Study. Tissue Eng Part A. 2018; 24 (19-20): 1504-1517.
3. Piedra MAM, Alaminos M, Fernández Valadés Gámez R, España López A, Liceras-Liceras E, Sánchez Montesinos I, Martínez-Plaza A, Sánchez-Quevedo MC, R Fernández-Valadés, Garzón I. Development of a multilayered palate substitute in rabbits: a histochemical ex vivo and in vivo analysis. Histochem Cell Biol. 2017; 147(3): 377-388.
4. Gómez de Ferraris, Campos Muñoz. Histología, embriología e ingeniería tisular bucodental, 2019, 4ta edición, editorial Médica Panamericana. P3-36.
5. Berón MP. Historia de la teoría celular. Universidad Nacional de Mar del Plata. 2006.
6. Apablaza F. Antecedentes históricos y conceptos básicos en el estudio de las células madre: células troncales, o la madre de todas las células. Rev. Actuali. Clinic. Meds. 2017; 1(1): p6-16
7. Fernández González A, Lizana Moreno A, de Pablos Ramos M, Ruiz García A, Espinosa Ibáñez O, Fernández Porcel N, Guerrero Calvo J, Arrabal M, López-Carmona F, Arias-Santiago S.
Optimización del cultivo de queratinocitos humanos para el desarrollo de un modelo de piel artificial humana: alternativas celulares como capa alimentadora. Real Academia de Medicina y Cirugía de Andalucía Oriental; Universidad de Granada. Agosto, 2016.
8. Smalley M, Ashworth A. Stem cells and breast cancer: a field in transit. Nature Reviews Cancer. 2003. 3: p832–844.
9. Gómez de Ferraris Ma.E, Campos Muñóz A. Histología, embriología e ingeniería tisular bucodental. Tercera edición. 2009. Editorial médica Panamericana. p2-26 p381-392.
10. Redón J, Jiménes L P, Urrego P A. Células madre en odontología. Revista CES Odontología. 2011; 24 (1)
11. Aquino-Martínez R, Angelo A.P, Ventura Pujol F. Calcium-containing scaffolds induce bone regeneration by regulating mesenchymal stem cell differentiation and migration. Stem cell research & therapy. 2017; 8: 265 p. doi: 10.1186/ s13287-017-0713-08.
12. Shakya A K, Kandalam U. Three-dimensional macroporous materials for tissue engineering of craniofacial bone. Br J OralMaxillofac- Surg.2017; 55 (9): 875–891.
13. Lee CL, Hajibandeh J, Suzuki T, Fan A, Shang P, Mao JJ. Three-dimensional printed multiphase scaffolds for regeneration of periodontium complex. Tissue engineering Part A. 2014; 20 (7-8): 1342-51.
14. Thrivikraman G, Athirasala A, Twohig Ch, Kumar Boda S. Biomaterials for Craniofacial Bone Regeneration. Dent Clin North Am D. 2017; 61 (4): 835-856.
15. Habraken W, Habibovic P, Epple M, Bohner M. Calcium phosphates in biomedical applications: materials for the future. Materials Today. 2016; 19 (2): 69-87.
16. Stoppel WL, et al. Clinical applications of naturally derived biopolymer-based scaffolds for regenerative medicine. Ann Biomed Eng. 2015; 43 (3): 657–80.
17. Kang Y, Kim S, Fahrenholtz M, et al. Osteogenic and angiogenic potentials of monocultured and co-cultured human-bone-marrow-derived mesenchymal stem cells and human-umbilicalvein endothelial cells on three-dimensional porous beta-tricalcium phosphate scaffold. Acta biomaterialia. 2012; 9 (1): 4906-15.
18. Tollemar V, Collier ZJ, Mohammed MK, Lee MJ, Ameer GA 4, Russell R. Stem cells, growth factors and scaffolds in craniofacial regenerative medicine. Genes Dis. 2016; 3 (1): 56–71.
19. Walsh WR, Morberg P, Yu Y, Yang JL, Haggard W, Sheath PC, Svehla M, Bruce WJM. Response of a calcium sulfate bone graft substitute in a confined cancellous defect. Clin Orthop Relat Res. 2003; 406: 228–36.
20. Martín-Del-Campo M, Sampedro JG, Flores- Cedillo ML, Rosales-Ibañez R, Rojo L. Bone Regeneration Induced by Strontium Folate Loaded Biohybrid Scaffolds. Molecules. 2019; 24 (9): 1660. doi: 10.3390/molecules24091660
21. Habraken W, Habibovic P, Epple M, Bohner M. Calcium phosphates in biomedical applica- tions: materials for the future? Materials Today. 2016; 19 (2).
22. Zhang B, Han Z, Duan K, Mu Y, Weng J. Multilayered pore-closed PLGA microsphere delivering OGP and BMP-2 in sequential release patterns for the facilitation of BMSCs osteogenic
differentiation. J Biomed Mater Res Part A. 2018; Vol106A. p95–105. DOI: 10.1002/ jbm.a.36210
23. Shen XF, Zhang YX, Gu Y, Xu Y, Liu Y, Li B. Sequential and sustained release of SDF-1 and BMP-2 from silk fibroin-nanohydroxyapatite scaffold for the enhancement of bone regeneration.
Biomaterials. 2016; 106: 205–216.
24. Mijiritsky E, Ferroni L, Gardin Ch, Bressan E, Zanette G, Piattelli A, Zavan B. Porcine Bone Scaffolds Adsorb Growth Factors Secreted by MSCs and Improve Bone Tissue Repair. Materials
(Basel, Switzerland). 2017; 10 (9): 1054. doi: 10.3390/ma10091054